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生物制藥殘留DNA提qu試劑盒(碘化na法)

簡要描述:殘留DNA提qu試劑盒遵照中國藥典記載的碘化na法,適用于疫苗和治療用生物制品所含宿主細胞殘余DNA的提取。
殘留DNA提qu試劑盒可以提取樣品中含有的極微量的DNA,回收率較高。DNA的提取操作時間為60-90 min。提取的DNA可以通過qPCR進行定量。

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2025-10-30

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生物制藥殘留DNA提qu試劑盒(碘化na法)生物制藥殘留DNA提qu試劑盒(碘化na法)



殘留DNA提qu試劑盒遵照中國藥典記載的碘化na法,適用于疫苗和治療用生物制品所含宿主細胞殘余DNA的提取。

殘留DNA提qu試劑盒可以提取樣品中含有的極微量的DNA,回收率較高。DNA的提取操作時間為60-90 min。提取的DNA可以通過qPCR進行定量。



生物制藥殘留DNA提qu試劑盒(碘化na法)

生物制藥殘留DNA提qu試劑盒(碘化na法)



◆特點


● 高回收率回收微量DNA(100-1,000 fg)

● 無需更換試管(全程僅使用1根試管)

● 整個提取過程僅需60-90 min

● 提供高濃度蛋白樣品的前處理實驗方案

● 回收后的DNA可通過qPCR、Threshold Assay(Molecular Devices)進行定量

● 采用碘化na



◆原理


1. 使樣品中的蛋白質和脂質溶于碘化na月桂酰肌氨酸鈉;

2. 異丙醇與糖原選擇性地共沉淀DNA。



◆標準步驟


生物制藥殘留DNA提qu試劑盒(碘化na法)




◆應用實例


DNA spiking test(加標回收實驗)


生物制藥殘留DNA提qu試劑盒(碘化na法)

生物制藥殘留DNA提qu試劑盒(碘化na法)

生物制藥殘留DNA提qu試劑盒(碘化na法)



DNA Extractor™ Kit可以高產量提取殘留DNA,甚至少量殘留DNA。



◆抗體藥物適用性研究


從高蛋白溶液中提取DNA


使用不同濃度的IgG溶液檢測CHO來源DNA的加標回收率。


方法


1) 向不同濃度的IgG溶液(10-100 mg/mL)中添加2 pg/mL CHO來源DNA。

2) 按照本產品說明書記載的實驗方案提取DNA。

      ● 提取實驗方案:Protocol#2

      ● 樣品前處理:蛋白濃度超過2 mg/mL時實施的前處理方案(Proteinase K處理)

3) 通過qPCR法計算提取的CHO來源DNA的回收率。


結果


不同蛋白濃度溶液的Cq值


Sample

Input

蛋白濃度 (mg/mL)

10

20

40

60

80

100

Cq

31.596

31.566

31.351

31.726

31.502

31.282

31.658

31.599

31.608

31.774

31.787

31.485

31.66

31.338

31.861

31.5

31.85

31.56

31.369

Average Cq

31.511

31.678

31.542

31.788

31.531

31.379

31.659

Difference of Cq

0

-0.167

0.136

-0.246

0.257

0.152

-0.28

Power

1

0.891

1.099

0.843

1.195

1.111

0.824

Recovery Rate (%)

100

89.1

109.9

84.3

119.5

111.1

82.4


不同蛋白濃度溶液的CHO來源DNA回收率

生物制藥殘留DNA提qu試劑盒(碘化na法)


結果顯示,即使蛋白濃度高達100 mg/mL,也能高回收率提取CHO來源DNA。



從抗體藥物模擬溶液中提取 DNA


檢測抗體藥物常用的Buffer及添加劑制備的IgG溶液中的 CHO來源DNA的加標回收率。


方法


1) 向抗體藥物中常用的Buffer組成(表1.①-⑥)及添加劑溶液中添加20 mg/mL的IgG蛋白,制備不同的抗體藥物模擬溶液。向不同溶液中添加

1) 20 pg/mL CHO來源DNA。

2) 根據(jù)本產品說明書記載的實驗方案提取DNA。

      ● 提取實驗方案:Protocol#2

      ● 樣品前處理:蛋白濃度超過2 mg/mL時實施的前處理方案(Proteinase K處理)

3) 通過qPCR法計算提取的CHO來源DNA的回收率。


表1 Buffer組成


No.

Buffer組成

  10 mM PB pH 6.0, 0.15 M NaCl, 2 mM EDTA

  10 mM PB pH 7.4, 0.15 M NaCl, 2 mM EDTA

  50 mM NaOAc pH 5.2, 0.15 M NaCl, 2 mM EDTA

  10 mM PB pH 6.0, 2 mM EDTA

  10 mM PB pH 7.4, 2 mM EDTA

  50 mM NaOAc pH 5.2, 2 mM EDTA


表2 添加劑溶液


Buffer: 10 mM PB pH 6.0, 0.15 M NaCl, 2 mM EDTA


No.

添加劑(濃度)

  Sucrose (10 w/v%)

  Trehalose Dihydrate (10 w/v%)

  D(-)-Mannitol (10 w/v%)

  D(-)-Sorbitol (10 w/v%)

  D(+)-Maltose Monohydrate (10 w/v%)

  L(+)-Arginine Hydrochloride (1 w/v%)

  L‐Histidine (1 w/v%)

  Glycine (1 w/v%)

  Polyoxyethylene(20) Sorbitan Monooleate   (Tween80) (0.5 v/v%)

  Polyoxyethylene(20) Sorbitan Monolaurate   (Tween20) (0.5 v/v%)


結果


不同Buffer的Cq值


SampleInputBuffer
123456
Cq31.47331.69331.54431.21831.05831.59531.181
31.36431.19630.97331.56831.08531.34331.112
31.04531.5331.78731.31530.94231.45231.558
Average Cq31.29431.47331.43531.36731.02831.46331.284
Difference of Cq0-0.179-0.141-0.0730.266-0.1690.01
Power10.8830.9070.9511.2030.891.007
Recovery Rate (%)10088.390.795.1120.389100.7


不同Buffer的CHO來源DNA回收率

生物制藥殘留DNA提qu試劑盒(碘化na法)


不同添加劑溶液的Cq值


Sample

Input

添加劑溶液

Cq

31.473

31.826

31.327

30.907

31.143

31.071

31.525

31.525

31.013

31.086

31.364

31.194

30.991

31.759

31.103

31.279

31.068

31.442

31.203

31.34

30.87

31.045

30.703

31.009

30.978

31.225

31.479

30.757

31.02

31.02

Average Cq

31.294

31.241

31.159

31.225

31.123

31.109

31.273

31.461

31.162

31.124

30.992

Difference of Cq

0

0.053

0.135

0.069

0.171

0.185

0.021

-0.167

0.132

0.17

0.302

Power

1

1.037

1.098

1.049

1.126

1.137

1.015

0.891

1.096

1.125

1.233

Recovery Rate (%)

100

103.7

109.8

104.9

112.6

113.7

101.5

89.1

109.6

112.5

123.3


不同添加物溶液的CHO來源DNA回收率

生物制藥殘留DNA提qu試劑盒(碘化na法)


結果顯示,即使含有不同Buffer組成和添加劑的IgG溶液也能高回收率提取CHO來源DNA。



◆試劑盒構成


產品編號

內容物

內容量

299-81111

碘化na溶液, CP

26 mL

296-81121

月桂酰肌氨酸鈉, CP

1.2 mL

293-81131

洗凈液A, CP

42 mL

290-81141

洗凈液B, CP

40 mL×2

297-81151

糖原溶液, CP

0.1 mL


備注:每種成分不單獨出售



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292-81101殘留DNA提qu試劑盒(碘化na法)
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